Aproximación didáctica al estudio de los flebotomos y su control bajo el enfoque de “Una sola Salud”
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Palabras clave

Flebotomos
Phlebotomus
Leishmania infantum
insectos vectores
zoonosis

Cómo citar

Gálvez Esteban, R., Gómez Molinero, M. Ángel, & López De Felipe Escudero, M. (2020). Aproximación didáctica al estudio de los flebotomos y su control bajo el enfoque de “Una sola Salud”. Revista Madrileña De Salud Pública, 4(8), 1-12. https://doi.org/10.36300/remasp.2020.072

Resumen

Los flebotomos son los insectos transmisores del protozoo parásito que causa la leishmaniosis. Este artículo de revisión tiene como objetivo el poder resolver, desde una aproximación didáctica, las principales preguntas que pueden surgir cuando abordamos el estudio de estos vectores y sus implicaciones en salud pública y animal. En primer lugar, profundizaremos en el conocimiento de la biología de los flebotomos. En segundo lugar, en el apartado de zoonosis, resaltaremos su relevancia en la transmisión de Leishmania spp. y de otros patógenos. Por último, describiremos los métodos de prevención y control disponibles actualmente frente a la infección causada por Leishmania spp bajo el enfoque de “Una sola salud”.

https://doi.org/10.36300/remasp.2020.072
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Kamhawi S. The yin and yang of leishmaniasis control. PLOS Negl Trop Dis. 2017;11(4): e0005529. https://dx.doi.org/10.1371%2Fjournal.pntd.0005529

Dujardin J-C, Campino L, Cañavate C, Dedet J-P, Gradoni L, Soteriadou K, et al. Spread of Vector-borne Diseases and Neglect of Leishmaniasis, Europe. Emerg Infect Dis. 2008;14(7):1013‑8. https://dx.doi.org/10.3201/eid1407.071589

Horrillo L, Castro A, Matía B, Molina L, García-Martínez J, Jaqueti J, et al. Clinical aspects of visceral leishmaniasis caused by L. infantum in adults. Ten years of experience of the largest outbreak in Europe: what have we learned? Parasites Vectors. 2019;12(1):359. https://dx.doi.org/10.1186%2Fs13071-019-3628-z

Gálvez R, Montoya A, Cruz I, Fernández C, Martín O, Checa R, et al. Latest trends in Leishmania infantum infection in dogs in Spain (Part I): mapped seroprevalence and sand fly distributions. Parasites Vectors. 2020;13:204:12. https://doi.org/10.1186/s13071-020-04081-7

Miró G, Petersen C, Cardoso L, Bourdeau P, Baneth G, Solano-Gallego L, et al. Novel Areas for Prevention and Control of Canine Leishmaniosis. Trends in Parasitology. 2017; 33(9): 718-730. https://doi.org/10.1016/j.pt.2017.05.005

Maroli M, Feliciangeli MD, Bichaud L, Charrel RN, Gradoni L. Phlebotomine sandflies and the spreading of leishmaniases and other diseases of public health concern. Med Vet Entomol. 2013;27(2):123‑47. https://doi.org/10.1111/j.1365-2915.2012.01034.x

Gálvez R, Checa R, Miró G. Control de ectoparásitos. Canis et felis. 2019; 161:38‑48.

Killick-Kendrick R. The biology and control of phlebotomine sand flies. Clin Dermatol. 1999;17(3):279–289. https://doi.org/10.1016/s0738-081x(99)00046-2

Service M. Medical entomology for students. 5th ed. Cambridge: Cambridge University Press; 2012.

Alten B, Maia C, Afonso MO, Campino L, Jiménez M, González E, et al. Seasonal Dynamics of Phlebotomine Sand Fly Species Proven Vectors of Mediterranean Leishmaniasis Caused by Leishmania infantum. PLOS Negl Trop Dis. 2016;10(2): e0004458. https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0004458

Lozano-Romera E, Ortega-Martínez E. Datos preliminares sobre el ciclo nictimeral de Phlebotomus perniciosus Newstead, 1911 y Phlebotomus sergenti Parrot, 1917 (Diptera, Psychodidae). Anales de Biología. 1998;9–18.

Gil Collado J, Morillas Márquez F, Sanchis M. Los flebótomos en España. Rev San Hig Pub. 1989; 63:15‑34.

Alexander B, Maroli M. Control of phlebotomine sandflies. Med Vet Entomol. 2003;17(1):1‑18. https://doi.org/10.1046/j.1365-2915.2003.00420.x

Gálvez R, Montoya A, Fontal F, Martínez De Murguía L, Miró G. Controlling phlebotomine sand flies to prevent canine Leishmania infantum infection: A case of knowing your enemy. Res Vet Sci. 2018; 121:94‑103. https://doi.org/10.1016/j.rvsc.2018.10.008

García L, Rodríguez-Alarcón M, Sierra J, Suárez B, Monge S, Fernández S, et al. Informe de situación y evaluación del riesgo de enfermedad por flebovirus transmitidos por flebótomos en España [Internet]. 2019 [Consultado 27 de mayo de 2020]. Disponible en: https://www.mscbs.gob.es/gl/profesionales/saludPublica/ccayes/analisisituacion/doc/ER_Flebovirus.pdf

Molina R. Laboratory adaptation of an autochthonous colony of Phlebotomus perniciosus Newstead, 1911 (Diptera: Psychodidae). Res Rev Parasitol. 1991;51(1‑4):87–9.

Maia C, Cardoso L. Spread of Leishmania infantum in Europe with dog travelling. Vet Parasitol. 2015;213(1‑2):2‑11. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2015.05.003

Fischer D, Thomas SM, Beierkuhnlein C. Modelling climatic suitability and dispersal for disease vectors: the example of a phlebotomine sandfly in Europe. Procedia Environmental Sciences. 2011; 7:164‑9. https://doi.org/10.1016/j.proenv.2011.07.029

Rioux JA, Aboulker JP, Lanotte G, Killick-Kendrick R, Martini-Dumas A. Écologie des leishmanioses dans le sud de la France. Influence de la température sur le développement de Leishmania infantum Nicolle, 1908 chez Phlebotomus ariasi Tonnoir, 1921. Étude expérimentale. Ann Parasitol Hum Comp. 1985;60(3):221‑9. https://doi.org/10.1051/parasite/1985603221

Reisen WK. Landscape Epidemiology of Vector-Borne Diseases. Annu Rev Entomol. 2010;55(1):461‑83. https://doi.org/10.1093/jmedent/35.4.435

Lucientes Curdi J, Sánchez Acedo C, Castillo Hernández J, Estrada Peña A. Sobre la infección natural por Leishmania en Phlebotomus perniciosus Newstead, 1911 y Phlebotomus ariasi Tonnoir, 1921, en el foco de leishmaniosis de Zaragoza. Rev Iber Parasitol. 1988; 48:7‑8.

Martínez Ortega E, Conesa Gallego E. Fenología de los flebótomos del subgénero Larrosius (Dip. Psychodidae, Phlebotomus) en el sureste de la Península Ibérica. Boletín Asoc esp Entom. 1987; 11:293‑300.

Gálvez Esteban R, Molina Moreno R(dir), Miró Corrales G(dir). Factores que influyen sobre la epidemiología de la leishmaniosis canina y sus vectores en la Comunidad de Madrid: obtención de modelos predictivos de riesgo mediante sistemas de información geográfica. [tesis doctoral en Internet] [Madrid]: Universidad Complutense de Madrid; 2012 [citado el 22 abril 2020]. Recuperado a partir de: http://eprints.ucm.es/15210/

Kamhawi S. Phlebotomine sand flies and Leishmania parasites: friends or foes? Trends Parasitol. 2006;22(9):439‑45. https://doi.org/10.1016/j.pt.2006.06.012

Dye C, Guy MW, Elkins DB, Wilkes TJ, Killick-Kendrtck R. The life expectancy of phlebotomine sandflies: first field estimates from southern France. Med Vet Entomol. 1987;1(4):417‑25. https://doi.org/10.1111/j.1365-2915.1987.tb00372.x

Lladó M, Rotger M. Estudio del flebótomo como vector de la leishmaniasis en la isla de Mallorca. Palma de Mallorca: Conselleria de Sanitat i Seguretat Social del Govern Balear; 1990.

Schlein Y, Jacobson RL, Messer G. Leishmania infections damage the feeding mechanism of the sandfly vector and implement parasite transmission by bite. Proc Natl Acad Sci USA. 1992; 89(20):9944‑8. https://doi.org/10.1073/pnas.89.20.9944

Courtenay O, Peters NC, Rogers ME, Bern C. Combining epidemiology with basic biology of sand flies, parasites, and hosts to inform leishmaniasis transmission dynamics and control. Gubbels M-J, directeur. PLoS Pathog. 2017;13(10): e1006571. https://doi.org/10.1371/journal.ppat.1006571

Solano Gallego L, Miró G, Koutinas A, Cardoso L, Pennisi MG, Ferrer L, et al. LeishVet guidelines for the practical management of canine leishmaniosis. Parasites Vectors. 2011;4(1):86. https://doi.org/10.1186/1756-3305-4-86

Baneth G, Koutinas AF, Solano-Gallego L, Bourdeau P, Ferrer L. Canine leishmaniosis – new concepts and insights on an expanding zoonosis: part one. Trends Parasitol. 2008;24(7):324‑30. https://doi.org/10.1016/j.pt.2008.04.001

Miró G, Rupérez C, Checa R, Gálvez R, Hernández L, García M, et al. Current status of L. infantum infection in stray cats in the Madrid region (Spain): implications for the recent outbreak of human leishmaniosis? Parasites Vectors. 2014;7(1):112. https://dx.doi.org/10.1186%2F1756-3305-7-112

Arce A, Estirado A, Ordobas M, Sevilla S, García N, Moratilla L, et al. Re-emergence of leishmaniasis in Spain: community outbreak in Madrid, Spain, 2009 to 2012. Euro Surveill. 2013;18(30):20546. https://doi.org/10.2807/1560-7917.ES2013.18.30.20546

Miró G, Müller A, Montoya A, Checa R, Marino V, Marino E, et al. Epidemiological role of dogs since the human leishmaniosis outbreak in Madrid. Parasites Vectors. 2017;10:209:7. https://dx.doi.org/10.1186%2Fs13071-017-2147-z

González E, Jiménez M, Hernández S, Martín-Martín I, Molina R. Phlebotomine sand fly survey in the focus of leishmaniasis in Madrid, Spain (2012–2014): seasonal dynamics, Leishmania infantum infection rates and blood meal preferences. Parasites Vectors. 2017;10(1):368. https://dx.doi.org/10.1186%2Fs13071-017-2309-z

Miró G, Gálvez R, Fraile C, Descalzo MA, Molina R. Infectivity to Phlebotomus perniciosus of dogs naturally parasitized with Leishmania infantum after different treatments. Parasites Vectors. 2011;4(1):52. https://dx.doi.org/10.1186%2F1756-3305-4-52

Dantas-Torres F, Miró G, Bowman DD, Gradoni L, Otranto D. Culling Dogs for Zoonotic Visceral Leishmaniasis Control: The Wind of Change. Trends Parasitol. 2019;35(2):97‑101. https://doi.org/10.1016/j.pt.2018.11.005

Ares Gomez S, Picado A. Systemic insecticides used in dogs: potential candidates for phlebotomine vector control? Trop Med Int Health. 2017;22(6):755‑64. https://doi.org/10.1111/tmi.12870

Miró G, Montoya A, Roura X, Gálvez R, Sainz A. Seropositivity rates for agents of canine vector-borne diseases in Spain: a multicentre study. Parasites Vectors. 2013;6(1):117. https://dx.doi.org/10.1186%2F1756-3305-6-117

Saghafipour A, Vatandoost H, Zahraei-Ramazani AR, Yaghoobi-Ershadi MR, Rassi Y, Karami Jooshin M, et al. Control of zoonotic cutaneous leishmaniasis vector, Phlebotomus papatasi, using attractive toxic sugar baits (ATSB). PLOS ONE. 2017;12(4): e0173558. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0173558

Derbali M, Chelbi I, Cherni S, Barhoumi W, Boujaâma A, Raban R, et al. Évaluation au laboratoire et sur le terrain de l’imidaclopride sous forme d’appâts pour les rongeurs afin de contrôler les populations de Phlebotomus papatasi Scopoli, 1786 (Dipetra: Psychodidae). Bull Soc Pathol Exot. 2013;106(1):54‑8. https://doi.org/10.1007/s13149-012-0274-5

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